培养细胞都有哪些步骤以及注意事项
通常在实验室里，实验人员做的最多的工作就是培养各种不同的细胞。培养细胞从来就不是一个轻松的工作，它需要大量的专业知识和专业的技巧，还需要有专业的济南实验仪器才可以正常的进行实验。通常来说，一个实验的好坏，最终还是取决于细胞的培养。那么，在培养细胞，都有哪些流程和需要注意的地方呢？昆腾商贸的小编今天来给大家简单的说一下吧。
1、细胞复苏
乐发2将冻存细胞从液氮中取出后，在37℃水浴锅内不断摇动促进其融化。将融化的细胞移入离心管中，加入37℃预热的DMEM完全培养基中（其中胎牛血清约为10%），轻轻吹匀，离心，500g离心2min，弃上清液。
加入DMEM完全培养基清洗，弃上清液。加入DMEM完全培养基，轻轻吹打混匀，制成细胞悬液，接种于培养实验仪器的皿/瓶中，在含5% CO2的细胞培养箱中培养。
2、细胞传代
当细胞密度达到80%~90%（过早产量不足，过晚细胞状态不佳，1:2至1:10以上的比率传代培养，一般1:3至1:5细胞一代，即从细胞接种到分离再培养的一段时间，非细胞有丝分裂次数）时，去掉完全培养基，用1X PBS清洗2次。
乐发2加入胰蛋白酶（注意：消化液的量以盖住细胞更好，比较好的消化温度是37℃。显微镜下观察细胞：倒置显微镜下观察消化细胞，若胞质回缩，细胞之间不再连接成片，表明此时细胞消化适度）进行消化，放入细胞培养箱中约2-3min。
加入适量DMEM完全培养基终止胰蛋白酶消化，转移至离心管后500g离心2min，弃上清液，再加入DMEM完全培养基清洗，弃上清液。
乐发2加入DMEM完全培养基，轻轻吹打混匀，吸取10微升进行计数，然后按照所需细胞量在含5% CO2的细胞培养箱继续培养。
3、细胞冻存
乐发2当细胞密度达到80%~90%时，去掉完全培养基，用1X PBS清洗2次。加入胰蛋白酶进行消化，放入细胞培养箱中约2-3min。加入DMEM完全培养基终止胰蛋白酶消化，转移至离心管后500g离心2min，弃上清液，再加入DMEM完全培养基清洗，弃上清液。加入lml冻存液（90%胎牛血清，10%DMSO。 一般来讲血清含量可以在10%-90%之间调整，冻存液中加入血清一方面可以为细胞提供营养，另一方面可以在细胞冻存过程中提供非渗透性保护物质，如蔗糖，白蛋白等从而更好地保护细胞），放入冻存管内（管内有异丙醇，以保证温度降低的速度），立即放入4℃冰箱中冻存30min，然后放入-20℃冰箱中冻存30min，再置于-80℃冰箱内过夜。
第二天放入液氮中，可以保存至少两年，如不放人液氮，可以保存三个月。
细胞冻存和复苏的原则是：慢冻速融，这样更加有利于保持细胞的活力。冻存细胞不加任何保护剂，会导致细胞内冰晶的产生，从而使细胞产生内源性的机械损伤，引起细胞内环境渗透压，PH，电解质等的改变，进而促使细胞死亡。
上面就是关于细胞培养的一些方法，我们在进行细胞培养的时候，一定要注意济南实验耗材的分类和使用，这样才能更好的完成自己的实验成果。细胞是一个很小很小的东西，它的所需要的参数以及培养液也很多，尤其是对于细胞培养瓶更是有着很高的要求。如果有细胞培养瓶购买的需求，可联系我们的工作人员。
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